Fauna y Flora en zonas de influencia del Trasvase Manso, 2024

El monitoreo de murciélagos se realizó durante 30 días en campo mediante muestreos puntuales diarios, evaluando tres noches por sitio en diez (10) coberturas. Se siguió la metodología de monitoreo de murciélagos propuesta por Díaz-Pulido et al. (2015), utilizando seis redes de niebla de 12 m x 2 m x 3 cm por noche, abiertas entre las 18:00 y las 23:00 horas y revisadas cada 15 minutos. Los murciélagos fueron capturados en bolsas de tela para ser medidos, identificados y registrados en el programa FULCRUM, incluyendo datos como especie, sexo, edad, peso, estado reproductivo y estado de desarrollo, localidad, coordenadas, altitud, fecha, número de captura y determinación taxonómica (Linares, 1998; Muñoz, 2001 y Díaz et al., 2016). Las especies de murciélagos frugívoros se mantuvieron en las bolsas por un tiempo más prolongado con el fin de recolectar sus heces para analizar las semillas y comparar con estudios fenológicos.

Para escarabajo se utilizó la metodología recomendada por Cultid-Medina & Medina (2015) para el monitoreo de procesos de restauración ecológica. Se instalaron trampas de caída tipo pitfall no letales cebadas con excremento humano, utilizando vasos desechables de 500 ml y 10 cm de diámetro enterrados a ras del suelo. Dentro de cada trampa, se colocó un embudo plástico para evitar la fuga de los escarabajos. El cebo se suspendió a 10 cm del suelo mediante un recipiente desechable y cinta, y las trampas fueron protegidas con un plato plástico en forma de techo.

Se instalaron seis trampas por sitio, separadas por 40 m, alcanzando un total de 60 trampas por muestreo. Cada trampa estuvo activa durante 72 horas y fue revisada cada 24 horas. La trampa fue la unidad de muestreo, sin la necesidad de transectos. Los escarabajos capturados que no pudieron ser identificados en campo debido a su tamaño o falta de registros previos fueron preservados temporalmente en bolsas herméticas con acetato de etilo y etiquetas con la fecha, número de trampa y sitio de captura.

Para la identificación taxonómica, se utilizaron claves especializadas (Génier, 1998; Vaz de Mello et al., 2011), y los especímenes fueron observados bajo un microscopio estereoscópico Carl Zeiss. Dado que algunos géneros como Canthidium, Onthophagus y Uroxys presentan alta diversidad y carecen de revisiones recientes en Colombia, se compararon con los ejemplares recolectados durante el pre-muestreo (M0) y con la colección del Instituto Alexander von Humboldt.

Para la identificación taxonómica, se utilizaron claves especializadas (Génier, 1998; Vaz de Mello et al., 2011), y los especímenes fueron observados bajo un microscopio estereoscópico Carl Zeiss. Dado que algunos géneros como Canthidium, Onthophagus y Uroxys presentan alta diversidad y carecen de revisiones recientes en Colombia, se compararon con los ejemplares recolectados durante el pre-muestreo (M0) y con la colección del Instituto Alexander von Humboldt.

Para el monitoreo de aves, cada sitio fue muestreado durante tres días consecutivos entre las 6:00 y las 11:00 horas utilizando el método de captura y anillamiento (Aguilar-Garavito & Ramírez, 2015). Se emplearon seis redes de niebla de 12 m x 2 m x 3 cm en cada cobertura. Las aves capturadas fueron colocadas en bolsas de tela de algodón por no más de 30 minutos para evitar el estrés. Se registró cada individuo en una ficha de campo con el sitio de captura, fecha, número de captura y determinación taxonómica siguiendo las claves de Hilty et al. (2001), Restall et al. (2006) y McMullan et al. (2010).

De acuerdo con los protocolos de Ralph et al. (1996) y Villareal et al. (2006), se tomaron datos como sexo, edad, estado reproductivo, grasa, plumaje y medidas morfológicas: peso corporal, longitud del tarso, culmen, largo de la cola y cuerda alar. Las aves frugívoras fueron anilladas con códigos únicos, se fotografió a cada especie por cobertura y luego fueron liberadas.

Para el monitoreo de flora en las 22 parcelas tipo Whittaker de 1000 m² anteriormente establecidas(Comiskey et al., 1999). Se analizaron nuevos individuos que ingresaron a los estratos fustales, brinzal, latizal y regeneración, evaluando variables como el diámetro a la altura del pecho (DAP) y otras características específicas.

Las muestras botánicas fueron recolectadas utilizando tijeras podadoras y cortarramas, y en casos necesarios, se realizaron ascensos al dosel, según las técnicas de Anderson et al. (2015) y Perry (1978), lo que también permitió medir la altura de los árboles.

En las parcelas de 1000 m², los árboles se clasificaron según el DAP: en la parcela D (fustales), se incluyeron árboles con DAP ≥ 10 cm, excluyendo las áreas de las subparcelas B1, B2 y C; en la subparcela C (latizal, 20x5 m), árboles con DAP ≥ 5 cm; en las subparcelas B1 y B2 (brinzal, 2x5 m), individuos con DAP ≥ 1 cm; y en las subparcelas A1-A10 (regeneración, 10 subparcelas de 2x0,5 m), hierbas, pastos y árboles en estado brinzal no incluidos en las categorías anteriores.