Caracterización de los grupos hidrobiológicos asociados al Estudio de impacto ambiental para la modificación de la licencia ambiental de Campo Estero, Maní, Casanare

Perifiton: La colecta de las muestras se efectuó raspando los sustratos naturales presentes en las estaciones monitoreadas (troncos, piedras y hojas), en un área conocida (cuadrante de perifíton de 7,82 cm2) con un cepillo en 10 ocasiones. Posteriormente, el material acumulado se disolvió en un frasco de vidrio ámbar que contenía alcohol al 70% y se le agregaron unas gotas de Lugol para facilitar su
identificación en el laboratorio.

Macroinvertebrados bentónicos y asociados a macrófitas: Las muestras fueron colectadas con una red Surber de diámetro de ojo de malla de 300 µm, en donde el área de la red es de 0,09 m2. En el caso de la comunidad bentónica, la red fue depositada en 10 ocasiones sobre el lecho del cuerpo de agua, con la abertura en dirección contraria a la corriente (loticos), o con ayuda de la mano barriendo el sustrato en dirección a la red (lenticos), desplazando los sedimentos dentro del cono. Por su parte, los macroinvertebrados asociados a macrófitas fueron capturados sumergiendo la red en sitios con abundante presencia de macrófitas, realizando un recorrido vertical desde las raíces hasta las demás estructuras vegetativas capturando todo el material presente. El material colectado fue depositado en bolsas de seguridad, fijado con alcohol al 70 %, y teñido con el colorante Rosa de Bengala.

Fitoplancton: Las muestras fueron tomadas con la ayuda de una red de plancton, con diámetro de ojo de malla de 23 µm, que permite la colecta de organismos mayores a este diámetro, además de la concentración de la muestra. Se utilizó un recipiente de volumen de agua conocido (balde de 10 L) para efectuar la filtración de la muestra por la red (100L). Esta consta de un cono o colector ubicado en la parte inferior, en el cual se concentran los organismos colectados. Posterior a la filtración, se prosiguió con el almacenamiento de las muestras en frascos ámbar, las cuales fueron fijadas utilizando alcohol al 70%; adicionalmente se agregaron unas gotas de Lugol para facilitar la identificación en el laboratorio.

Zooplancton: La colecta de las muestras se efectuó de forma similar al fitoplancton, con la ayuda de una red de plancton de mayor micraje (55 µm), ya que el tamaño de estos organismos es superior al del fitoplancton, filtrando un total de 100L. Una vez tomadas las muestras se procedió a depositarlas en los frascos debidamente etiquetados. Posteriormente, se agregó un agente narcótico (soda),
adicionando a la muestra trazas de bórax que evita o reduce la contracción o distorsión de los organismos. Una vez narcotizados y luego de 30 minutos, se añadió la solución conservante o fijadora (Etanol 70%) para su posterior traslado al laboratorio.

Ictiofauna: Para el muestreo de ictiofauna, se usaron las artes de pesca que permiten muestrear especies de talla pequeña de bajo o nulo interés pesquero. Se utilizó una atarraya de ojo de malla de 2 cm y una nasa de pesca), realizando un esfuerzo de muestreo de una hora por cada uno de estos. Los datos de los organismos capturados fueron registrados en los formatos de campo. Las especies obtenidas, fueron fotografiadas en vista lateral, superior e inferior. Adicionalmente se tomaron fotografías detalladas de las aletas pélvicas, pectorales, anal, dorsal y caudal, así como de la cabeza en vista lateral, superior, inferior y frontal. Posteriormente, dichas especies fueron liberadas nuevamente al medio. Para especies pequeñas de difícil identificación, además del registro fotográfico, posteriormente se colectaron los especímenes en frascos de vidrio transparentes preservados con formol al 10%.

Macrófitas acuáticas: Para la caracterización de esta comunidad se realizó un transecto de 10 m paralelo a la orilla del sistema, dividiendo éste entre el área terrestre y el área acuática (zona litoral), dependiendo la longitud de los parches de macrófitas (Esteves, 1998), en cada cuerpo de agua. Por medio de un cuadrante de dimensiones conocidas (1m x 1m), se estimaron las coberturas (en porcentaje) de las diferentes plantas que quedaban ubicadas dentro del cuadrante, realizando tres réplicas en la interfase
agua – tierra y tres réplicas en la fase acuática.
Luego de obtener las coberturas, se tomará un ejemplar de cada una de las morfoespecies existentes en la estación, para lo cual se extraerán ejemplares que presenten sus estructuras reproductivas (flores y frutos), raíces y hojas completas. El material colectado se limpiará previamente con abundante agua, con el fin de eliminar los excesos de materia orgánica o sedimento adherido a las raíces u hojas y se prensará en papel periódico. Cada espécimen envuelto en periódico se humedecerá con alcohol al 70% (por medio de un atomizador) para su preservación y transporte al laboratorio. Se tomará el registro fotográfico de todas las especies registradas en campo, al igual que a cada uno de los cuadrantes estimados durante el monitoreo.