Tejidos colectados en la ventana Beltrán, corregimiento Paquiló, Municipio de Beltrán, Cundinamarca

FLORA
Se utilizaron tres métodos para caracterizar la flora de los bosques secos, matorrales subxerofíticos, bosques secos riparios y vegetación secundaria presente en los mosaicos asociados a los sitios seleccionados. Estos métodos fueron: recorridos libres sin colecta, recorridos libres con colecta y realización de un perfil de bosque ribereño.

Toma de datos
Fecha, coordenadas geográficas del registro, localidad, altitud, tipo de cobertura, datos taxonómicos (familia, género, especie), nombre común, usos (si los tiene), número(s) del(los) registro(s) fotográfico(s) correspondiente(s) y notas de campo respecto a asociaciones florísticas observadas.

Identificación taxonómica y colección de especímenes
La determinación taxonómica en el nivel de familia y género se realizó en campo, con base en el conocimiento del especialista que hizo el muestreo, Mateo Hernández, y con ayuda de la guía de Gentry (1993). Para el nivel de especie, se utilizaron claves taxonómicas de las diferentes familias.

Toma de datos
Cada espécimen fue registrado en la libreta de campo con la siguiente información:
Fecha, colector, coordenadas geográficas del registro, localidad, altitud, datos taxonómicos (familia, género y especie), nombre común, usos (si los tiene), número de campo, número de duplicados, descripción de la especie, que incluye el hábito (árbol, hierba, liana o arbusto), hábitat (terrestre, acuática-enraizada o flotante, o epifita), altura y otras características que se pierden después del secado del material y, por último, información acerca de las muestras (datos de tejido, flores en alcohol y/o fotografías).

Identificación taxonómica y colección de especímenes
La determinación taxonómica fue realizada en campo, con base en el conocimiento de los especialistas Mateo Hernández y José Aguilar y, posteriormente confirmada, con la ayuda de la colección del herbario FMB del Instituto Humboldt (Villa de Leyva, Boyacá), donde también fueron depositados los ejemplares.
Las muestras de tejido se hicieron siguiendo el protocolo del IAvH, lo cual implicó tomar láminas de hojas jóvenes, verificar que éstas estuvieran libres de señales de herbivoría, polen, suelo, líquenes u hongos, así como señales de daño causado por otros microorganismos, con el fin de evitar contaminación con material genético exógeno. Posteriormente, de cada lámina foliar se retiraron las nervaduras central y secundarias, en caso que estuvieran altamente lignificadas. Los fragmentos obtenidos se cortaron en cuadros de no más de 1 cm de lado y se depositaron en sobres de papel debidamente etiquetados, los cuales se almacenaron y preservaron en bolsas plásticas con silica gel, para ser depositadas en la Colección de Tejidos del IAvH-CIAT en Cali.

Total muestras de tejido: 190 registros.

ESCARABAJOS COPRÓFAGOS
Muestreo
Se estableció un transecto lineal por cobertura (natural, semi-natural y productiva) en los mosaicos. En los fragmentos de coberturas naturales los transectos se ubicaron lo más lejos posible de sus límites, para disminuir el efecto de borde. En cada transecto se instalaron 10 trampas, separadas entre sí por 50 m, para una distancia total de 450 m.
Se utilizaron trampas de caída, cebadas con 35 gramos de excremento humano o con vísceras de pollo. Estas consistieron en dos vasos plásticos de 16 onzas, enterrados con el borde a ras del suelo. El vaso superior se llenó a la mitad con una solución de agua, jabón y sal. Sobre la boca de este vaso se suspendió el cebo envuelto en una gaza, sujetado a un palito por medio de una cuerda. Las trampas se cubrieron con un plato plástico de tamaño mediano para evitar daños por la lluvia. Las trampas fueron revisadas cada 24 horas, por un periodo de 96 horas. En cada revisión se colectaron los individuos capturados y se reemplazó la solución.

Toma de datos
Los escarabajos capturados fueron depositados en bolsas ziplock, usando una bolsa por trampa, que fue etiquetada con los siguientes datos: fecha, coordenadas geográficas de la trampa, localidad, altitud, tipo de cobertura e información de la trampa (número de la trampa, hora de captura, tiempo de exposición del cebo, tipo de cebo, entre otros).

Identificación taxonómica y colección de especímenes
El material colectado y almacenado en las bolsas fue llevado a la estación de trabajo donde se limpió, se separó por especie y se identificó, siguiendo los criterios y conocimiento del investigador especialista. Una vez en Bogotá, el material fue limpiado de nuevo y se entregado al encargado de la Colección Entomológica del Instituto Humboldt (Villa de Leyva, Boyacá).
Así mismo, se realizaron muestras de tejido para las especies con más de un individuo. En el caso de especies pequeñas, se tomó como muestra entre uno y diez ejemplares completos. En el caso de especies grandes, se tomó la pata posterior izquierda. Este material se preservó en alcohol al 96% dentro de viales sellados y etiquetados respectivamente con el nombre de la especie contenida. Luego se almacenó en nevera a 0°C (grados Celsius) y posteriormente se depositó en la Colección Entomológica del Instituto Humboldt (Villa de Leyva, Boyacá).
La identificación de las especies se hizo con base en el material de referencia de la colección personal del especialista que realizó el muestreo (Alejandro Lopera, CECC, Registro 002) y el material de la Colección Entomológica del Instituto Humboldt (Villa de Leyva, Boyacá).

Total muestras de tejido: 18 registros.

AVES
Se utilizaron los siguientes tres métodos para caracterizar la avifauna presente en los mosaicos asociados a los sitios seleccionados: recorridos libres, transectos de amplitud fija y apertura de redes de niebla.

Toma de datos
En cada recorrido se anotó la hora inicial y final, así como las condiciones climáticas del mismo. Adicionalmente, se registraron los siguientes datos de las especies de aves observadas y escuchadas, tanto en los recorridos libres como en los transectos:
fecha, coordenadas geográficas y número del registro, localidad, altitud, tipo de cobertura, datos taxonómicos (familia, género, especie), número de individuos por especie, sexo, edad, hábitat en el que se hizo el registro, estrato (dosel, sotobosque) y sustrato (rocas, tronco), comportamiento, estrategia de forrajeo, tipo de alimento consumido y observaciones generales, número(s) del(los) registro(s) fotográfico(s) correspondiente(s) y, en algunos casos, número de la grabación o registro acústico correspondiente.

Toma de datos
Se manipularon los individuos capturados en la redes para tomar sus medidas morfométricas (ala: longitud; cola: longitud; culmen expuesto; culmen desde las narinas; pico: longitud, altitud, ancho y color de mandíbula y maxila; tarso: longitud y color de las patas; longitud total: cuerpo y cola; longitud corporal: cuerpo sin la cola; peso; ojo: color; estado del plumaje: fresco, regular, gastado o de incubación; muda: cuerpo, ala, cola o total; grasa corporal: presencia o ausencia de parche de cría y nivel de grasa pectoral; cráneo: osificado, semiosificado, no osificado; y gónadas: diámetro y longitud de las gónadas. Igualmente, se evaluaron las características que permitieran identificar su edad (cráneo, ciclo de muda, tipo de muda), sexo y estado reproductivo (parche de cría, protuberancia cloacal). Finalmente, los individuos capturados fueron fotografiados y liberados. Es importante anotar que durante todos los días de muestreo gracias a la asistencia de personal de apoyo especializado se pudieron llevar a cabo las dos técnicas de muestreo (redes y transectos) prácticamente de forma simultánea, completando así seis horas diarias de captura por redes y aproximadamente siete de recorridos en transectos.

Identificación taxonómica y colección de especímenes
La identificación taxonómica de los individuos observados y capturados se realizó en campo, con base en el conocimiento del especialista que realizó el muestreo (Juan Sebastián León) y con ayuda principalmente la Guía de Aves de Colombia (Hilty & Brown 1986) y Field Guide to the Birds of Colombia (McMulan & Donegan 2014). En particular, para la nomenclatura de las familias y especies se siguió a Remsen et al. (2014), ya que recientemente se han realizado cambios en la taxonomía de ciertos grupos, especialmente al interior de los paseriformes.
Fueron colectados y etiquetados los individuos que no pudieron identificarse en campo, individuos de especies no reportadas para la zona o especies para las cuales los registros realizados dentro del presente estudio ampliaran su área de distribución establecida en la literatura. Además, se tomaron muestras de tejido, aproximadamente 5 g del músculo de la pierna del ejemplar, y se depositaron en tubos plásticos de 3 ml. con alcohol etílico al 90%, posteriormente y según PALACIO, citado en Villareal et al. 2004, se fijó en tres terceras partes de solución de lisis (0,1 ml. de Tris, 0,1 ml. de EDTA, 0,01 ml. de NaCl y 0,5% de SDS), durante la manipulación se empleó alcohol etílico y un mechero, para evitar la contaminación de las muestras.
Posteriormente, los especímenes y los tejidos fueron depositados en la Colección del Instituto Humboldt (Villa de Leyva, Boyacá).

Total muestras de tejido: 19 registros.

PECES
Sitios de muestreo: se seleccionaron tres cuerpos de agua para la caracterización de la ictiofauna: río Magdalena (en el tramo comprendido entre Paquiló y Beltrán, Cundinamarca), río Venadillo (Ambalema, Tolima) y quebrada Calacuta (Beltrán, Cundinamarca).

*Sobre el río Magdalena se distribuyeron nueve de las 11 estaciones de muestreo, en un tramo comprendido entre el corregimiento de Paquiló (Beltrán, Cundinamarca) y Ambalema (Tolima). El sustrato predominante era arenoso, con parches limosos y algunas playas con cantos rodados rocosos.
*Sobre el río Venadillo se ubicó una estación de muestreo, 100 metros aguas arriba de su desembocadura sobre el río Magdalena. El sustrato era principalmente arenoso. La vegetación de la ribera era predominantemente arbustiva, con algunos parches aislados de plantas de plátano y guadua.
*En la quebrada Calacuta se ubicó una estación de muestreo, al norte del municipio de Beltrán, 100 metros aguas arriba de su desembocadura sobre el río Magdalena. El sustrato era predominantemente arenoso-limoso en las zonas de empozadas, y rocoso en las zonas de mayor corriente. La vegetación de la ribera era espesa, con el estrato arbóreo dominante.

Técnicas de muestreo
Los muestreos se realizaron durante cuatro días (23 al 26 de Noviembre de 2014), en horarios de 7:00 a las 17:00 horas, empleando las siguientes artes de pesca, con esfuerzos de captura de 1 hora por cada una y por estación de muestreo, como se describe a continuación:

*Atarraya: Se empleó una atarraya de 2,5 metros de radio y una (1) pulgada de entrenudo con esfuerzos de captura de 1 hora por cada estación de muestreo. Los lanzamientos se realizaron desde un bote que permitió el acceso a zonas con cauces y pozos amplios, con substratos libres de empalizadas y rocas de cantos rodados, tanto en biotopos cercanos a la ribera como centrales al cauce del cuerpo de agua. Se muestrearon 10 de las 11 estaciones con esta metodología y se obtuvo una captura total de 119 individuos y 3546 gramos de biomasa con un esfuerzo de muestreo de 10 horas.
*Chinchorro: Se utilizó un chinchorro de 5 metros de longitud, 1 metro de altura y 1 mm de entrenudo. Se realizaron muestreos en zonas de playa, con fondos libres de empalizadas y rocas con barridos a favor de la corriente. Se muestrearon 6 estaciones y se capturaron 46 individuos y un total de 420 gramos de biomasa en un esfuerzo de muestreo de 6 horas.
*Salabardo: Se usó un salabardo de 50 cm de diámetro y 1 mm de entrenudo con barridos bajo la vegetación marginal y zonas de hojarasca. Se empleó en 1 estación de muestreo y se capturó 1 individuo con 15 gramos de biomasa en 1 hora de esfuerzo de muestreo.

Toma de datos
En cada estación se llevaron a cabo los siguientes registros:
Datos generales: tipo de fondo, vegetación circundante, coloración del agua, esfuerzo de captura, hora y fecha de muestreo.
Ubicación geográfica: Coordenadas geográficas, cuerpo de agua, departamento, municipio.
Datos biológicos: medición de la biomasa de cada lote de peces capturado y medición de longitud total de los individuos no preservados. Colección y preservación de tejido para análisis de ADN.
Datos fisicoquímicos: medición de pH, temperatura y conductividad, con un multiparámetro Hanna 98130 y un test kit de oxígeno disuelto HI3810.

Identificación taxonómica y colección de especímenes
Los individuos capturados fueron preservados en formol al 10 % en frascos de vidrio con la etiqueta correspondiente a cada estación de muestreo y arte de pesca empleada. Para cada morfoespecie se realizaron fotografías de los individuos, previo a su preservación en formol. Se tomó una muestra de tejido de un individuo, para esto se cortó aproximadamente un 1cm2 de la aleta pélvica derecha y se preservó en alcohol absoluto (al 96%) en viales con tapa removible de rosca. El material usado para el corte fue previamente limpiado con alcohol y sometido al fuego para evitar la contaminación por rastros de ejemplares diferentes al procesado. El ejemplar al que se le realizó la extracción de tejido fue preservado en formol al 10% y etiquetado con el mismo número de campo que la muestra de tejido.
Los ejemplares preservados fueron analizados en laboratorio, en donde se separaron todas las morfoespecies y se realizó su determinación taxonómica con ayuda de las siguientes claves y descripciones: peces del norte de Colombia (Dahl 1971), los peces del río Magdalena (Miles 1971), peces de los Andes (Maldonado-Ocampo et al. 2005) y peces del Alto Magdalena (Villa-Navarro et al. 2006).
Adicionalmente, a cada lote de organismos se le realizó una medición de la biomasa.
Los individuos preservados, procesados y etiquetados, fueron depositados en la colección del Instituto Humboldt (Villa de Leyva, Boyacá).

Total muestras de tejido: 1 registro.